產品信息
產品名稱 |
產品編號 |
規格 |
價格(元) |
MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit 磁珠法殘留DNA樣本前處理試劑盒(瓶裝) |
18461ES25 |
25 T |
425.00 |
18461ES60 |
100T |
1,395.00 |
產品描述
MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit適用于生物制品樣本中殘留DNA檢測的前處理。采用獨特的磁珠和精心優化的緩沖體系,可最大限度的分離純化樣本中的微量宿主細胞殘留DNA。
該前處理試劑盒可與本公司的多種宿主細胞DNA殘留(qPCR法)檢測試劑盒配合使用,包括CHO宿主細胞殘留DNA檢測試劑盒(Cat#41301ES)、HEK293宿主細胞殘留DNA檢測試劑盒(Cat#41302ES)、Vero宿主細胞殘留DNA檢測試劑盒(Cat#41303ES)和E.coli殘留DNA檢測試劑盒(Cat#41304ES)。
產品組分
類別 |
組分編號 |
組分名稱 |
產品編號/規格 |
|
18461ES25(25 T) |
18461ES60(100 T) |
|||
Part I |
18461-A |
蛋白酶K(20 mg/mL) |
0.5 mL/支×1支 |
1 mL/支×2支 |
Part Ⅱ |
18461-B |
磁珠懸浮液 |
0.5 mL/支×1支 |
1 mL/支×2支 |
18461-C |
裂解液 |
2.5 mL/瓶×1瓶 |
10 mL/瓶×1瓶 |
|
18461-D |
結合液 |
10 mL/瓶×1瓶 |
40 mL/瓶×1瓶 |
|
18461-E |
洗滌液A* |
6 mL/瓶×1瓶 (需加9 mL乙醇) |
24 mL/瓶×1瓶 (需加36 mL乙醇) |
|
18461-F |
洗滌液B* |
3 mL/瓶×1瓶 (需加12 mL乙醇) |
12 mL/瓶×1瓶 (需加48 mL乙醇) |
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18461-G |
洗脫液 |
2.5 mL/瓶×1瓶 |
10 mL/瓶×1瓶 |
|
Part Ⅲ |
18461-H |
糖原 |
225 μL/支×1支 |
900 μL/支×1支 |
18461-I |
Poly A鉀鹽 |
150 μL/支×1支 |
600 μL/支×1支 |
運輸和保存方法
1. Part I組分冰袋運輸,4℃可保存1年,長期保存于-20℃。
2. Part II組分室溫運輸,室溫保存,有效期1年。
3. Part Ⅲ組分干冰運輸,-20℃保存1年。
4. 收到貨后,請檢查Part I、Part II和Part Ⅲ共3個組分是否齊全,并立即放入對應的保存溫度中儲存。
注意事項
1. 使用前請詳細閱讀使用說明書,嚴格按照使用說明書操作,樣本處理建議在超凈臺或生物安全柜中進行。
2. 注意觀察常溫保存溶液是否有析出或渾濁(尤其冬季室溫為低溫環境時),可37℃水浴至溶液澄清,避免影響使用效果。
3. 洗脫時可能存在磁珠殘留,吸取樣本時應盡量避免吸入磁珠。
4. 處理樣本及加樣時,勤換槍頭,避免交叉污染。
5. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并佩戴一次性手套操作。
6. 本產品僅作科研用途。
實驗前準備
1. 自備設備:漩渦振蕩器、水浴鍋或金屬浴、離心機、磁性分離架、杭州奧盛Auto-Pure32A自動化核酸提取儀或其他品牌全自動化核酸提取儀。
2. 自備耗材:10μL-1000μL不等的低吸附帶濾芯槍頭、1.5 mL低吸附離心管、PCR 8連管或96孔板及相應的管蓋或覆膜。
3. 自備試劑:無水乙醇(分析純)、1×PBS緩沖液(pH 7.4,無 Mg 和 Ca 離子)、超純水。
【注】:推薦您購買本公司的超純水(Cat#10116ES)。
4. 首次使用時,需在洗滌液A*和洗滌液B*瓶中加入標簽或說明書中注明體積的無水乙醇,充分混勻后使用,并做好標記。每次使用后將瓶蓋蓋緊,以保持瓶中的乙醇含量。
一、手工提取操作方法
1. 樣本處理
1.1 待測樣本為疫苗等本身含有較高的DNA含量的樣本,可用1×PBS(pH7.4,無Ca和Mg)對樣本進行適當比例稀釋后提取(對樣本進行稀釋是為了保證檢測的準確性,使樣本的檢測值在標準曲線線性范圍之內,通??煽紤]進行100倍稀釋)。
1.2 待測樣本為干粉的,可用超純水將樣本稀釋成10 mg/mL或者100 mg/mL后使用。
1.3 待測樣本為復雜背景基質的,可根據需要進行加標回收實驗,以確定合適的樣本稀釋倍數。
2. 取100 μL樣本裝于1.5 mL離心管中,加入100 μL裂解液和10 μL蛋白酶K,渦旋混勻10 sec。
【注】:樣本蛋白濃度0-100 mg/mL,蛋白酶K用量為10 μL;樣本蛋白濃度100-200 mg/mL,蛋白酶K用量為20 μL。
3. 60℃孵育20 min。
4. 孵育完成后,加入400 μL結合液、9 μL糖原和6 μL Poly A鉀鹽渦旋混勻。
5. 加入20 μL磁珠,渦旋混勻后,放置10 min,每隔3 min渦旋混勻10 sec。
【注】:磁珠使用前需渦旋混勻,保證磁珠徹底重懸。在一次性加樣4-5次后,建議再次混勻后再行加樣。
6. 短暫離心后,將離心管置于磁力架上靜置1-2 min,待磁珠完全吸附,小心吸出液體。
7. 加入500 μL洗滌液A(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),振蕩或渦旋混勻,確保磁珠分散,離心管壁無聚集磁珠。
8. 短暫離心后,將離心管置于磁力架上靜置1-2 min,待磁珠完全吸附,小心吸取液體。
9. 加入500 μL洗滌液B(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),振蕩或渦旋混勻,確保磁珠分散,離心管壁無聚集磁珠。
10. 短暫離心后,將離心管置于磁力架上靜置1-2 min,待磁珠完全吸附,小心吸取液體。
11. 為保證盡量吸出殘留液體,可將離心管快速離心10 sec后,置于磁力架上用10 μL移液器吸出殘留液體。
12. 打開管蓋,室溫放置3 min直至乙醇完全揮發。觀察到磁珠表面無反光或出現裂隙即表明乙醇已揮發完全。
13. 將離心管從磁力架上取下,加入50-100 μL 65℃預熱的洗脫液,振蕩混勻,短暫離心后,65℃孵育5 min,期間可振蕩混勻1次。
14. 短暫離心后,將離心管放置于磁力架上靜置2 min,待磁珠完全吸附,小心將DNA溶液轉移至新的離心管中,保存于-20℃,長期保存需放置于-80℃。
二、半自動化提取操作方法
配套自動化儀器使用,以杭州奧盛Auto-Pure32A自動化核酸提取儀為例(如要配套其他主流品牌自動化儀器使用,程序可向翌圣生物科技(上海)股份有限公司獲?。?/span>
1. 樣本處理
1.1 待測樣本為疫苗等本身含有較高的DNA含量的樣本,可用1×PBS(pH7.4,無Ca和Mg)對樣本進行適當比例稀釋后提取(對樣本進行稀釋是為了保證檢測的準確性,使樣本的檢測值在標準曲線線性范圍之內,通??煽紤]進行100倍稀釋)。
1.2 待測樣本為干粉的,可用超純水將樣本稀釋成10 mg/mL或者100 mg/mL后使用。
1.3 待測樣本為復雜背景基質的,可根據需要進行加標回收實驗,以確定合適的樣本稀釋倍數。
2. 取100 μL樣本裝于1.5 mL離心管中,加入100 μL裂解液和10 μL蛋白酶K,渦旋混勻10 sec。
【注】:樣本蛋白濃度0-100 mg/mL,蛋白酶K用量為10 μL;樣本蛋白濃度100-200 mg/mL,蛋白酶K用量為20 μL。
3. 60℃孵育20 min,即為預處理樣本,待用。
4. 按照下表向96孔深孔板中加入相應試劑(以杭州奧盛Auto-Pure32A核酸提取儀為例):
板的名稱 |
位置 |
試劑名稱 |
用量/孔 |
樣品處理板 |
V1 |
預處理樣本 |
200 µL |
結合液 |
400 µL |
||
糖原 |
9 µL |
||
Poly A鉀鹽 |
6 µL |
||
漂洗板 |
V2 |
洗滌液A* |
500 µL |
洗滌板/磁珠板 |
V3 |
磁珠懸浮液 |
20 µL |
洗滌液B* |
500 µL |
||
洗脫板 |
V6 |
洗脫液 |
50-100 µL |
【注】:磁珠懸浮液使用前需在渦旋混勻儀上充分重懸或充分顛倒混勻,在一次性加樣4-5次后,建議再次混勻后再行加樣。
5. 按照提取儀的位置,正確安放上述96孔預裝板,并放置96深孔磁棒套。
6. 運行如下程序,程序結束后,將洗脫液轉移至新的離心管中,溶液可置于-20℃短期保存,-80℃長期保存。
奧盛Auto-Pure32A的提取儀器的提取程序
步驟 |
孔位 |
混合時間(min) |
吸磁時間(sec) |
等待時間(min) |
容積(μL) |
混合速度(1-10) |
溫度(℃) |
混合位置(0-100%) |
混合幅度(1-100%) |
吸磁位置(0-100%) |
吸磁速度(1-10) |
移磁珠 |
3 |
0.2 |
60 |
0 |
500 |
5 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
結合 |
1 |
15 |
90 |
0 |
600 |
5 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
清洗1 |
2 |
1 |
60 |
0 |
500 |
8 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
清洗2 |
3 |
1 |
60 |
4 |
500 |
8 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
洗脫 |
6 |
8 |
90 |
0 |
100 |
10 |
65 |
0 |
80 |
0 |
1 |
棄磁珠 |
3 |
0.2 |
0 |
0 |
500 |
5 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
HB220518