產品描述
Protein A純化介質由于與大多數抗體有特異性吸附,因此被廣泛地用于抗體藥物生產過程中,其中Protein A通過共價鍵與純化介質結合,但在純化過程中Protein A有一定脫落幾率而殘留下來。Protein A ELISA Kit是一款能夠準確定量樣品中殘留Protein A的ELISA試劑盒,可用于抗體純化過程中的工藝優化、關鍵質量參數評價以及中間產品和終產品中的Protein A殘留量檢測。
本試劑盒應用雙抗夾心酶聯免疫檢測(ELISA)的實驗原理進行Protein A殘留量檢測,將Protein A標準品和待測樣品加入預包被抗Protein A抗體的Protein A捕獲微孔板條(36716-A),然后加入稀釋后的生物素標記的Protein A檢測抗體(36716-C),最后加入Streptavidin-HRP(SA-HRP)(36716-D),形成抗體+抗原+抗體‐Biotin+ SA‐HRP 復合物,洗板后加入TMB顯色液(36716-F)顯色。TMB在HRP酶的催化下由無色轉化成藍色并在終止液(36716-G)的作用下最終轉換成黃色。黃色的深淺與樣品中被檢測到的Protein A的量呈正相關。
產品組分
編號 |
組分 |
產品編號/規格 |
36716ES96 (96 T) |
||
36716-A |
Protein A捕獲微孔板條 |
1塊(8孔×12條) |
36716-B |
Protein A標準品(1 μg/mL) |
100 μL |
36716-C |
Protein A檢測抗體(80×) |
300 μL |
36716-D |
Streptavidin-HRP(500×) |
60 μL |
36716-E |
吐溫-20(10%) |
1 mL |
36716-F |
TMB顯色液 |
12 mL |
36716-G |
終止液 |
10 mL |
36716-H |
稀釋液1(5×) |
10 mL |
36716-I |
稀釋液2 |
50 mL |
36716-J |
濃縮洗液(20×) |
50 mL |
36716-K |
封板膜 |
5 張 |
【注】:
1. 36716-H稀釋液1(5×)用于標準品和樣品的稀釋;
2. 36716-I稀釋液2用于檢測抗體和Streptavidin-HRP的稀釋;
運輸儲存方法
1. 冰袋運輸。2-8℃保存,有效期12個月;
2. 收到貨后,請檢查各組分是否齊全,并立即放入對應的保存溫度中儲存;
3. 請在有效期內使用該產品,禁止不同批次的相關試劑進行混用。
注意事項
1. 使用本試劑前請仔細閱讀本說明書,實驗應規范操作,包括樣本處理、反應時間控制及加樣操作;
2. 每個組分在使用前都應混勻,低速離心;
3. 所有試劑在打開之前,需要置于室溫至少30分鐘;
4. 貼壁加樣,保證不同管/孔間加樣體積一致,建議潤洗吸頭;
5. 洗板后向孔板加樣前,需要確保板內洗液已被拍除干凈;
6. 每步向孔板中加樣前,需確??變葻o可見異物;
7. 吸取不同液體前,需要更換新的吸頭;
8. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作;
9. 避免終止液和顯色液接觸皮膚、眼睛或衣服,建議佩戴護目鏡;
10. 本產品僅作科研用途。
適用機型
包含但不限于以下儀器:
Molecular Devices:M和i系列
實驗前準備
一、本試劑盒未提供但實驗所需的實驗材料:
1. 量筒、1000mL燒杯、不同規格的EP管;
2. 無塵紙(用于洗板后拍板);
3. 無菌吸頭;
4. 樣品前處理板;
5. 去離子水或雙蒸餾水;
二、本試劑盒未提供但實驗所需的實驗設備和儀器:
1. 金屬浴/水浴鍋
2. 37℃恒溫箱
3. 全自動洗板機
4. 旋渦混勻儀、離心機
5. 不同規格的精密微量移液器、多通道微量移液器
6. 計時器、4℃冰箱
7. 能夠檢測450nm和630nm吸光度的酶標儀;
實驗方法
一、試劑、抗體準備:
根據所需的量,用去離子水或雙蒸水按1:20的比例,將濃縮洗液(20×)稀釋20倍,最終得到1×洗液。
舉例:取50 mL的濃縮洗液(20×)加入950 mL的去離子水中配成1000 mL 1×洗液。
【注】:如果濃縮洗液(20×)中出現結晶,在50℃的水浴鍋中溫浴,直至結晶完全消失。
根據所需的量,用去離子水或雙蒸水按1:5的比例,將稀釋液1(5×)稀釋5倍,最終得到1×樣品稀釋液。
【注】:如果稀釋液1(5×)中出現結晶,在50℃的水浴鍋中溫浴,直至結晶完全消失。
根據檢測所需的量用稀釋液2按照1:80的比例,將Protein A檢測抗體(80×)稀釋至1×。
根據所需的量,用稀釋液2按照1:500的比例,將HRP濃縮液(500×)稀釋至1×。
二、Protein A標準品溶液制備
提前準備9個1.5mL離心管,參照下表,分別加入對應體積的1×稀釋液1。隨后參照下表稀釋步驟依次制備標準品500 pg/mL、250 pg/mL、125 pg/mL、62.5 pg/mL、31.25 pg/mL、15.625 pg/mL、7.813 pg/mL和0 pg/mL。注意各濃度標準品需要設置復孔。
表1 Protein A標準品溶液制備
管號 |
標準品濃度 |
移取 |
1×稀釋液1 |
標準品終濃度 |
1 |
1 μg/mL標準品(36716-B) |
5 μL |
995 μL |
5 ng/mL |
2 |
5 ng/mL 標準品(管1) |
100 μL |
900 μL |
500 pg/mL |
3 |
500 pg/mL標準品(管2) |
500 μL |
500 μL |
250 pg/mL |
4 |
250 pg/mL標準品(管3) |
500 μL |
500 μL |
125 pg/mL |
5 |
125 pg/mL的標準品(管4) |
500 μL |
500 μL |
62.5 pg/mL |
6 |
62.5 pg/mL的標準品(管5) |
500 μL |
500 μL |
31.25 pg/mL |
7 |
31.25 pg/mL的標準品(管6) |
500 μL |
500 μL |
15.625 pg/mL |
8 |
15.625 pg/mL的標準品(管7) |
500 μL |
500 μL |
7.813 pg/mL |
9 |
1×樣品稀釋液 |
/ |
500 μL |
0 pg/mL |
三、樣品準備
1.需要將樣品蛋白濃度稀釋至10mg/mL以下,較高的抗體濃度可能會干擾檢測的準確度;
2.樣品PH值調整到6.0-7.5的范圍;
3.注意各待測樣品需要設置復孔。
四、樣本和標準品處理
由于脫落的Protein A可以結合抗體的Fc區,抗體-Protein A復合體會影響對Protein A的檢出,所以實驗前需要先將Protein A和抗體分開,本產品中使用加熱方式進行Protein A和抗體分離。加熱變性以后,抗體經過離心后沉淀,Protein A留于上清液中。具體實驗步驟如下:
1.向離心管中加入不低于500 μL的待測樣本和標準品(500 pg/mL、250 pg/mL、125 pg/mL、62.5 pg/mL、31.25 pg/mL、15.625 pg/mL、7.813 pg/mL和0 pg/mL);
2.每個樣本中加入1%體積的吐溫‐20(10%)(36716-E)至終濃度為0.1%,混勻;
3.將離心管置于金屬浴100℃或者沸水中保持10分鐘;
4.室溫冷卻,11,000 rpm離心5分鐘;
5.將含有Protein A的上清液轉移至新的離心管中并做好標記。
【注】:若待測樣品中Protein A濃度較高,用1×稀釋液1稀釋至標準曲線范圍內再進行檢測。
實驗步驟
1.樣品孵育:
1)從鋁箔袋中取出需要的Protein A 捕獲微孔板條,剩余板條密封好放回2-8℃保存。確保板條已在孔板架上固定好。
2)將預處理好的待測樣品以及Protein A標準品(500 pg/mL、250 pg/mL、125 pg/mL、62.5 pg/mL、31.25 pg/mL、15.625 pg/mL、7.813 pg/mL和0 pg/mL)各100 μL加入對應板孔中。
3)用封板膜封板,37℃孵育60分鐘。
4)洗板:移去封板膜,棄去板孔中液體,每孔加入1×洗液250 μL,浸泡30秒,棄去洗液,重復洗滌4次。
【注】:本步驟可以在洗板機上完成。如用洗板機,請設置潤洗,洗液體積不少于250 μL,吸液時間不少于0.8秒,浸泡時間不少于10秒,重復洗滌4次。
5)在無塵紙上拍板,將板孔中的殘留液體拍干。
1)向每孔中各加入1×Protein A檢測抗體工作液100 μL。
2)用封板膜封板,37℃孵育60分鐘。
3)洗板,同第1節“樣品孵育”中的步驟4)。
4)在無塵紙上拍板,將板孔中的殘留液體拍干。
1)每孔加入Streptavidin-HRP (SA-HRP)100 μL。
2)用封板膜封板,37℃孵育40分鐘。
3)洗板,同第1節“樣品孵育”中的步驟4)。
4)在無塵紙上拍板,將板孔中的殘留液體拍干。
1)每孔加入TMB顯色液100 μL。
2)用封板膜封板,37℃避光反應15分鐘。
3)移去封板膜,每孔加入終止液50 μL。
4)終止后10分鐘內用酶標儀在450 nm與630 nm處測量吸光值。校準后的OD值為450nm的測定值減去630nm的測定值(OD450nm-OD630nm)。僅用450nm的測定值會導致OD值偏高,并且準確度降低。
5)以OD值為縱坐標,Protein A標準品濃度為橫坐標,繪制標準曲線,根據標準曲線計算出樣品中Protein A的濃度。
6)典型的參考標準曲線如下(僅供參考,每次實驗都需要制備標準曲線):
標準品濃度(pg/mL) |
校準OD值 |
|||
重復1 |
重復2 |
均值 |
擬合值 |
|
500 |
3.056 |
3.094 |
3.075 |
3.075 |
250 |
2.217 |
2.286 |
2.252 |
2.256 |
125 |
1.465 |
1.481 |
1.473 |
1.459 |
62.5 |
0.840 |
0.840 |
0.840 |
0.855 |
31.25 |
0.468 |
0.474 |
0.471 |
0.477 |
15.625 |
0.284 |
0.277 |
0.281 |
0.269 |
7.8125 |
0.168 |
0.170 |
0.169 |
0.162 |
0 |
0.052 |
0.052 |
0.052 |
0.060 |
【注】:擬合值是指把標準品濃度(X)帶入標準曲線公式得到的OD值(Y)。
產品性能
一、精密度
本試劑盒批內差小于10%,批間差小于15%。
批內差 |
批間差 |
||||
檢測數 |
均值 |
變異系數(%) |
檢測數 |
均值 |
變異系數(%) |
10 |
467.387 |
1.8% |
10 |
474.357 |
2.4% |
10 |
109.442 |
1.9% |
10 |
108.343 |
3.6% |
10 |
31.212 |
6.9% |
10 |
30.597 |
14.5% |
二、靈敏度
本試劑盒的最低檢測限(LOD)和最低定量限(LOQ)如下表:
樣本類型 |
LOD |
LOQ |
重組Protein A |
3.1 pg/mL |
15.6 pg/mL |
三、專屬性和回收率
向0.5 mg/mL IgG中加入不同濃度的protein A,同時檢測未加標的0.5 mg/mL IgG樣本。未加標的0.5 mg/mL IgG樣本檢測值小于定量限,加標樣本的回收率在85%-115%之間。
加入標準品濃度(pg/mL) |
0.5 mg/mL IgG 添加標準品 |
||||
重復1 |
重復2 |
平均OD |
實測值 |
回收率 |
|
500.000 |
3.263 |
3.262 |
3.263 |
468.6 |
93.72% |
125.000 |
1.689 |
1.773 |
1.731 |
123.8 |
99.04% |
31.250 |
0.584 |
0.581 |
0.583 |
34.70 |
111.00% |
0 |
0.061 |
0.064 |
0.063 |
< LOD |
- |
常見問題
問題 |
原因 |
解決方法 |
標準曲線不好 |
移液量不準確導致個別濃度不準確 |
|
稀釋方法不恰當導致濃度不準 |
|
|
試劑未完全恢復至室溫導致OD偏低 |
|
|
漏加或誤用其他試劑導致沒有梯度出現 |
|
|
重復性差 |
復孔中只有1個孔加了樣品 |
|
孔中有異物 |
|
|
加樣不準 |
|
|
洗板操作不當 |
|
|
OD值偏低 |
孵育時間太短 |
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移液量不足或稀釋不當 |
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|
漏加或誤用其他試劑 |
|
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TMB顯色液光下暴露時間過長已顯淺藍色 |
|
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沒有立即讀板 |
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本底偏高 |
洗板操作不當導致洗板不徹底 |
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TMB顯色液污染 |
|
|
TMB孵育時間過長 |
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HB221124